Textes et photos qui suivent sont de Carlos Marzano.
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Papilionidae

Battus polydamas LINNAEUS, 1758

Ficha taxonómica de la especie :
• Familia : Papilionidae
• Subfamilia : Papilioninae LATREILLE, 1802
• Género : Battus SCOPOLI, 1777
• Especie : polydamas LINNAEUS, 1758
• Subespecie : B. p. psittacus MOLINA, 1782, Argentina (Mendoza), Chile
• Subespecie : B. p. lindeni EHRMANN, 1926, TL : Argentine

Oruga de la mariposa Battus polydamas que se alimenta de la Aristolochia elegans una hermosa enredadera de flores extrañas. La mariposa es negra con escaso amarillo y rojo. Pueden defoliar completa una planta adulta con gran velocidad y voracidad.

Convertida ya en crisálida se produce la metamorfomosis treinta días de duracion hasta la eclosion del imago, que sujeto con sus patas y colgado de los restos de su cápsula pupal o de alguna hoja de la misma planta, llenara con hemolinfa sus venas alares de sus alas negras en los primeros minutos de vida adulta finalizando al ciclo de su metarmofosis

Planta hospedadora : Aristolochia elegans (familia Aristolochiaceae), autoctona de Argentina, enredadera de flores grandes exoticas, mal olientes. Nombre comun « pipa de holandes » por su forma. Se le atribuyen propiedades abortivas y antirreumáticas asi como sustancias cancerigenas. Esta planta es su alimento natural, medio para crecimiento y desarrollo. Su fetido perfume atrae moscas polinizadoras que al llegar hasta el fondo de la flor no logran salir por una pilosidad hasta que no se marchiten, liberadas salen con el polen adherido hacia otra flor.

Papilio (Pterourus) hellanichus HEWITSON, 1868

Ficha taxonómica
• Familia : Papilionidae LATREILLE, 1802
• Sub-familia : Papilio LINNAEUS, 1758
• Género : Pterourus SCOPOLI, 1777
• Grupo : scamander LAMAS, 2004
• Especie : hellanichus HEWITSON, 1868

Le groupe scamander comprend quatre espèces (selon G. LAMAS, Checklist of Neotropical Lepidoptera, 2004) :
- P. hellanichus : Uruguay et zones adjacentes
- P. scamander : Sud-est du Brésil
- P. birchalli : Panama y Colombia
- P. xanthopleura : Affluents du cours supérieur de l’Amazone

Las orugas comen berberis sp. Adulto : envergadura alar : 70 a 80 mm.

Pieridae

Tatochila autodice autodice HÜBNER, 1818

Taxonomia de la especie :

• Superfamilia : Papilionoidea
• Familia : Pieridae BOISDUVAL, 1829
• Subfamilia : Pierinae
• Tribu : Pierini
• Género : Tatochila BUTLER, 1870
• Especie : autodice HÜBNER, 1818
• Subespecie : autodice HÜBNER, 1818 (Uruguay, Argentina)
• Subespecie : blanchardii BUTLER, 1881 (Chile)
• Subespecie : ernestae HERRERA, 1954 (Chile)

Comun en Argentina. Envergadura alar 45mm, presenta un anillo periocular amarillo naranja, dimorfismo sexual por tener la hembra la cara inferior de sus alas con manchas mas notables. Vuela primavera y otoño es muy prolifica. Buena voladora entre pastos, arbustos, jardines y sembrados de alfalfa y coles. Considerada plaga para agricultura. Oruga verde amarilla con franjas en dorso azul grisaceas, manchas naranjas y puntos negros con cerdas blancas, longitud de 35 mm. Habitat : se extiende desde norte de Argentina hasta provincias de Neuquén y Rio Negro.

Colias lesbia lesbia (FABRICIUS, 1775)

Tierra del Fuego, Argentina, Brazil (Rio Grande do Sul), Uruguay = Colotis pyrrhothea HÜBNER, 1823 = Colias pyrrhothea var. heliceoides CAPRONNIER, 1874

Taxonómia
• Familia : Pieridae
• Subfamilia : Coliadinae
• Género : Colias FABRICIUS, 1807
• Especie : lesbia HÜBNER, 1819
• Subespecie : – lesbia lesbia FABRICIUS, 1775 (Argentina)
• Subespecie : – lesbia vauthierii GUÉRIN-MÉNEVILLE, 1830 (Argentina)

Descripción : Adulto de vuelo vigoroso con una envergadura alar de 3 a 4,5 cm, las anteriores anaranjadas con ápice y márgenes negros. Lunar negro. Alas posteriores anaranjadas margen negruzco y lunar rojizo. Las hembras son polimórficas con alas anaranjadas y anchos márgenes externos parduscos. Al plegar las alas, se observa un lunar blanco bordeado de negro y puntos pardos. Plantas hospedantes : alfalfa, tréboles, soja. Oruga defoliadora de la alfalfa : “perro de la alfalfa”, “ isoca de la alfalfa”. Crisalida cingulada, huevos verdosos amarillos.

Esta especie muy abundante antes de la expansion de cultivo de soja, con los plaguicidas y agroquimicos que trajo implicitos, disminuyo muy notablemente.

Colias lesbia : especie migratoria con grandes masas que duraban una semana transitando sobre la Bahia de Samborombón en Provincia de Buenos Aires según Darwin en 1832 (citado por Vargas Andrés en su libro Mariposas argentinas, p. 27) Habitat : pastizales, sembrados, jardines desde norte de Argentina hasta provincia de Rio Negro.

Lycaenidae

Calycopis gigantea JOHNSON, EISELE & MACPHERSON, 1988 Argentina

Ficha taxonómica de la especie :
• Familia : Lycaenidae
• Subfamilia : Theclinae
• Género : Calycopis SCUDDER, 1876

Vuela en matorrales bajos, presenta un ensanchamiento en el angulo anal que imita una cabeza con ojos (ocelos) y antenas (colas), que al frotar las alas distrae a los depredadores confundiendolos en su ataque, estas colas son comunes en Theclinae.

Hemiargus hanno STOLL, 1790

• Familia : Lycaenidae LEACH, 1815
• Subfamilia : Polyommatinae
• Género : Hemiargus HÜBNER, 1818
• Especie : Hemiargus hanno STOLL, 1790

Muy pequeña mariposa de las mas pequeñas del mundo. Envergadura alar 15-20 mm. Los machos con color azul iridiscente en el dorso y las hembras gris violaceo. Se posan sobre suelos humedos en busqueda de minerales y agua.

Riodinidae

Riodina lysippoides BERG, 1882

• Subfamilia : Riodininae
• Tribu : Riodinini
• Género : Riodina WESTWOOD, 1851
• Especie : Riodina lysippoides BERG, 1882
• Nombre vulgar : Danzarin

Una mariposa con ambos sexos muy parecidos, la hembra es algo mas clara en su colorido, es un insecto con alas casi negras con bandas anaranjadas en alas anteriores y posteriores en diagonales convergentes. Se posa con la cabeza hacia abajo con alas extendidas girando sobre si misma (de ello deriva su nombre) se halla en zonas de cursos de agua, cerca de sus orillas, y zonas de vegetación baja, montes serranos, no vuela a grandes distancias es de habitos sedentarios. En Argentina hay 3 especies.se extiende
por el norte y centro del pais.

Brassolidae

Opsiphanes invirae amplificatus STICHEL, 1907

Ficha taxonómica
• Orden : Lepidoptera • Suborden : Rhopalocera
• Superfamilia : Papilionoidea
• Familia : Nymphalidae RAFINESQUE, 1815
• Sub-familia : Satyrinae BOISDUVAL, 1833
• Tribu : Brassolini BOISDUVAL, 1836
• Género : Opsiphanes DOUBLEDAY, 1849
• Especie : invirae HÜBNER, 1818
• Subespecie : amplificatus STICHEL, 1907

Opsiphanes invirae : La oruga de color verde alcanza 6,5 cm de longitud presentando en todo el cuerpo pelos sedosos. La cabeza es prominente con cuernos y poderosas mandíbulas aptas para cortar fibras vegetales duras. Presenta dos largos apéndices caudales. Descansa sobre la nervadura central de la hoja. Invade las palmeras tanto nativas como exóticas llegando a devorar todo su follaje.

El adulto es de castaño oscuro con puntos blancos y un arco ocráceo que culmina en una amplia mácula castaña. Presenta 8 cm de expansión alar.

Heliconiinae

Agraulis vanillae LINNAEUS, 1758
En Argentine : A. v. maculosa STICHEL, 1908

Ficha taxonómica de la especie :
• Familia : Nymphalidae
• Subfamilia : Heliconiinae
• Tribu : Heliconiini
• Género : Agraulis BOISDUVAL & LE CONTE, 1835
• Especie : vanillae LINNAEUS, 1758
• Subespecie : maculosa STICHEL, 1908

“Mariposa espejito”. La oruga pardo negruzca con líneas anaranjadas y puntos blancos, posee espinas ramificadas. El adulto es de 72 mm de expansión alar, y posee alas color naranja con máculas castaño oscuro. En la parte inferior de las alas pueden observarse máculas plateadas, de allí su nombre vulgar.

Planta hospedadera : Passifloraceas : Passiflora coerulea • Orden Pariétales ; semillas pegadas a las paredes carpelares, Flores pentámeras • Familia : passifloraceae • Genero : Passiflora • Especie : coerulea. Especie autóctona de Argentina difundida en el mundo como decorativa. Nombre comun : pasionaria, flor de la pasion. Fruto comestible ; algunas especies se cultivan para preparar refrescos con el fruto (granadilla) y se comercializan. No existen en Europa ; hay mas de 400 especies descriptas.

Dryas julia alcionea (CRAMER, 1779)

• Familia : Nymphalidae
• Subfamilia : Heliconiinae
• Tribu : Heliconiini
• Género : Dryas HÜBNER,1807
• Especie : julia FABRICIUS, 1775
• Subespecie : alcionea CRAMER, 1779
• Nombre vulgar : Julia

Vuelo energico en altura mediana sobre matorrales con flores (Lantana camara) expuestos al sol asociada a otros ejemplares de su especie. De alas angostas, cuerpo delgado y largo, colores de advertencia por su mal sabor adquirida en etapa de larva con alimentación de Passifloraceae. Envergadura alar : 50 a 80 mm. Dimorfismo sexual no muy marcado ; hembras de colores mas apagados y mas pequeña. Oruga con cerdas pardo grisacea y machas laterales blancas asi como dorsales amarillas viven en Pasiflora sp. Crisálidas grisaceas, manchada de negro. Habita norte y centro de Argentina asi como Buenos Aires.

Euptoieta claudia hortensia BLANCHARD, 1852

Ficha taxonómica de la especie :
• Familia : Nymphalidae SWAINSON, 1827
• Subfamilia : Heliconiinae
• Tribu : Argynnini
• Género : Euptoieta DOUBLEDAY, 1848
• Especie : claudia CRAMER, 1775
• Subespecie : hortensia BLANCHARD, 1852
Pour certains auteurs, tel MARKKU SAVELA, il s’agit non pas d’une sous-espèce mais d’une espèce : Euptoieta hortensia BLANCHARD, 1852, Chile y Argentina.

Nymphalinae

Hypanartia bella FABRICIUS, 1793

Ficha taxonómica de la especie :
• Familia : Nymphalidae
• Subfamilia : Nymphalinae
• Tribu : Nymphalini
• Género : Hypanartia HÜBNER, 1821
• Especie : bella FABRICIUS, 1793

El imago de unos 45 mm tiene una pequeña cola en sus alas posteriores, se alimenta de Celtis tala (tala), Ortiga crespa, etc. La atraen flores de diferentes colores, vuela entre vegetación arbustiva se la encuentra por el norte hasta el centro del pais.

Tegosa claudina ESCHSCHOLTZ,1821

• Familia : Nymphalidae
• Subfamilia : Nymphalinae
• Tribu : Melitaeini NEWMAN, 1870
• Subtribe : Phyciodina HIGGINS, 1981
• Género : Tegosa HIGGINS, 1981
• Especie : Tegosa claudina ESCHSCHOLTZ,1821

Común. En cercanías de arroyos, y caminos, bien iluminados. Anaranjada amarillenta manchada de negro, de diseño variable, con vuelo erratico, sus preferencia, la mata con flores. Nectarivora, suele verse junto a otros individuos de la tribu Melitaeini.

Phystis simois variegata RÖBER, 1913

• Familia : Nymphalidae SWAINSON, 1827
• Subfamilia : Nymphalinae
• Tribu : Melitaeini NEWMAN, 1870
• Subtribu : Melitaeina NEWMAN, 1870
• Género : Phystis HIGGINS, 1981
• Especie : Phystis simois HEWITSON, 1864
• Subespecie : Phystis simois variegata RÖBER, 1913

Común. Se la suele observar revoloteando charcas en grupos de 5 o 6 individuos. En Las Lancitas Jujuy (Klimaitis). Observada en : Chaco, Jujuy, Misiones, San Luis, Córdoba, Buenos Aires. En las siguientes áreas protegidas : Calilegua (Jujuy), Quebrada del Condorito (Córdoba), Iguazu (Misiones), San Antonio (Misiones).

Ortilia ithra KIRBY, 1900

• Familia : Nymphalidae SWAINSON, 1827
• Subfamilia : Nymphalinae
• Tribu : Melitaeini NEWMAN, 1870
• Subtribu : Phyciodina
• Género : Ortilia HIGGINS,1981
• Especie : ithra KIRBY, 1780
• Nombre comun Mbatará (del aborigen guarani)

Envergadura alar 35 a 45mm.
Mariposas de tamaño pequeño con ambos sexos muy parecidos, vuela en matorrales bajos de flores pequeñas, con curso errático, tramos cortos sobre pajonales humedos, en bosques serranos del norte a centro del pais.

Las orugas se alimentan de Acanthaceae, generos Jacobinia y Ruellia.

Junonia genoveva hilaris C. & R. FELDER, 1867

• Familia : Nymphalidae SWAINSON, 1827
• Subfamilia : Nymphalinae
• Tribu : Junoniini REUTER, 1896
• Género : Junonia HÜBNER,1819
• Especie : Genoveva CRAMER, 1780
• Subespecie : hilaris C. & R. FELDER, 1867

Vuelo deslizante, bosques y matorrales se alimentan de néctar y minerales que liban de suelos humedos, asoleándose con alas extendidas.
La oruga se alimenta de lippia, plantago, calceolaria etc.
Se ve en Argentina de septiembre a mayo.
La crisálida suspendida, vive en estado pupal una semana al menos.
Esta especie se ve una fase conocida como hübneri KIRBY,1904, que en lugar de color azul de las alas posteriores posee un color pardo similar al de las alas anteriores.

Haywardella edmondsi BUTLER 1881

Ficha taxonómica de la especie :

• Familia : Nymphalidae SWAINSON, 1827
• Subfamilia : Satyrinae
• Género : Haywardella
• Especie : edmonsi BUTLER, 1881

Nombre comun : Anaranjada oculta o Rastrera anaranjada

Vuela sobre pastizales en areas serranas posandose en senderos sobre suelo desnudo, vuelo provocado.
Foto tomada en Merlo, Provincia de San Luis, Argentina el 7 febrero 2009.

Hesperiidae

Urbanus proteus LINNEO, 1758 Amérique

Ficha taxonómica de la especie :
• Família : Hesperiidae
• Subfamília : Pyrginae
• Género : Urbanus HÜBNER, 1807
• Species : Urbanus proteus LINNAEUS, 1758

Descripción: son principalmente especies tropicales de América de la Familia Hesperiidae. Hay aproximadamente 80 especies de América del Norte. La mayoría de los géneros son tropicales, y también ocurren en Eurasia. Los adultos de muchas especies se posan con sus alas abiertas, si bien algunos lo hacen con las alas medio abiertas o cerradas. Ellos beben el néctar de las flores, y los machos de muchas especies toman la humedad de la arena húmeda o barro. Algunos adultos también se alimentan de excremento de aves. Muchas especies tropicales reposan debajo de las hojas cuando estan inactivos. La mayoría de las especies ponen sus huevos directamente en las hojas de la planta de huesped, mientras que otros se establecen en plantas u objetos cercanos. Las orugas de muchas especies se alimentan de hojas amplias o palmadas como achiras (Canna) y las orugas enrollan lashojas como refugios y para empupar.

Urbanus proteus LINNEO, 1758 – comun Coludo verdoso. Vuelo rasante entre vegetación baja, pastizales o suelo desnudo. Envergadura alar 40 a 50 mm.

Castiniidae

Paysandisia archon BURMEISTER, 1879 (popular oruga de las palmeras)

• Familia : Castiniidae
• Tribu : Gazerini (Castniinae) LAMAS, 1995
• Género : Paysandisia HOULBERT, 1918
• Especie : Paysandisia archon BURMEISTER, 1879

(Sur les ravages en France de ce « tueur de palmiers », voir les sites : « Élagage et soins aux arbres » et « Plantes du Sud » ; voir encore cette page de l’INRA).

Difusión natural : Centro y norte de Argentina. Es nativo de Uruguay y Argentina central y ha sido introducido accidentalmente a Europa meridional, donde se esparce rápidamente. Se considera al único miembro del género Paysandisia. Huevos color rosa palido de 5 milimetros. Larvas al nacer anaranjadas y luego color blanco cremoso de 6 cm largo. Pupa color marron rojizo adherido a la planta y protegida por un capullo sedoso con fibras de la planta y excrementos. Esto es una polilla muy grande e impresionante con una envergadura de 90-110 mm. Las alas anteriores castaño oliva con rayas transversales mas claras, las posteriores anaranjaradas, con dos bandas irregulares negras y una blanca entre ellas, ojos compuestos bien desarrollados. Las hembras, generalmente más grande que los machos, son reconocidos fácilmente por el ovipositor prominente. Los adultos vuelan de junio a septiembre. Biología : la hembra pone 300 huevos colocados en axilas de las hojas, el adulto aparece en verano otoño. La larva es blanquecina come en los tallos y troncos de palmas En su medio natural, el daño hecho por las larvas es discreto y la especie no se considera una peste. Pero la especie causa daños en Europa veces fatal siendo causado a nativas y palmas exóticas. Llego desde el sur de Francia en 2001 (probablemente en especímenes maduras de palmeras Trithrinax de Argentina), se ha esparcido por la costa Mediterránea a partes de España e Italia y lo que se teme que sin el control efectivo, podría esparcirse a áreas donde palmas crecen a través de la región. La crisalida hace un capullo que incorpora fibras de palma dentro de la galería que se construye. Daños : las larvas se introducen en los troncos perforándolo y alimentadose de las fibras de palmera, las hojas presentan grandes orificios, se marchita la planta pierde vigor. Plantas huéspedes : palmeras nativas : Trithrinax campestres (Caranday) o exoticas como Phoenix sp. Plaga de difícil control que accidentalmente se introdujo en Francia y se extiende por Europa. Los castníidos son mariposas de tamaño medio a grande que están estrechamente relacionadas con los Cossidae y los Hesperiidae, presentando características de ambas familias. Los castníidos adultos pueden ser distinguidos de los Cossidae por la presencia de un apiculo en la parte distal de la masa antenal y de los Hesperiidae por la presencia de 3 venas cubitales en las alas y un mecanismo de cierre de ellas. La toma es de adulto recien eclosionado de la pupa sin desplegar aun sus alas, con flash, modo primer plano, trípode de hombro, recortado PSHOP, 4 Febrero 2006. [Voir : Mérit (Xavier) et Mérit (Véronique), 2002.- Une nouvelle espèce pour la France, Paysandisia archon (Burmeister, 1879), un ravageur de palmiers (Lepidoptera, Castniidae), Bulletin des Lépidoptéristes Parisiens, Vol. 11, n°22, septembre 2002 p. 41-43. Version pdf : paysandisia_archon_en_france

Sphingidae

Callionima grisescens grisescens GEHLEN, 1935

• Familia : Sphingidae
• Subfamilia : Macroglossinae
• Tribu : Dilophonotini
• Genero : Callionima
• Especie : grisescens ROTHSCHILD, 1894
• Subespecie : grisescens ROTHSCHILD, 1894 (Argentina)
• Subespecie : elegans GEHLEN, 1935 (Brazil)

Manduca rustica FABRICIUS, 1775

• Superfamilia : Bombycoidea
• Familia : Sphingidae
• Subfamilia : Sphinginae
• Tribu : Sphingini
• Género : Manduca
• Especie : rustica FABRICIUS, 1775

Se encuentra desde Estados Unidos hasta Argentina en el norte y centro de la Argentina. Abdomen con 3 parches amarillos redondeados. Su oruga se halla sobre Ligustrum vulgare, Syringa vulgaris, Lantana camara, Lagerstroemia indica, etc.

Agrius cingulata FABRICIUS, 1775

• Familia : Sphingidae LATREILLE, 1802
• Subfamilia : Sphinginae, LATREILLE, 1802
• Tribu : Acherontiini (unico genero en Argentina según More M. et alii )
• Género : Agrius HÜBNER, 1819
• Especie : cingulata FABRICIUS, 1775

40 a 70 mm de envergadura alar. Se le halla desde el Norte del pais hasta el centro Sur. Habitat : zonas rurales y suburbanas de zonas tropicales y subtropicales a templadas de America. Probóscide grande. Plantas huepedes : Asteraceae, Solanaceae (Datura). La oruga se alimenta tanto de noche como de día, hasta llegar a los 90-100 mm de largo en la madurez.

Toma al atardecer con trípode sobre corteza de Paraiso (Mellia azederach) en verano (Diciembre) de Argentina. Villa Amancay, Provincia de Cordoba.

Saturniidae

Oruga de Leucanella viridiscens WALKER, 1855

• Familia : Saturniidae BOISDUVAL, 1837
• Subfamilia : Hemileucinae
• Género : Leucanella LEMAIRE, 1969
• Especie : Leucanella viridiscens WALKER, 1855

Mariposas de tamaño mediano a grande con ocelos en alas posteriores color bordo con mancha central negra y lunulas blanco plateadas. Envergadura alar : 50-70 mm. La oruga es negra con cerdas amarillas urticantes. La oruga esta comiendo una hoja de la solanacea Solanum granulosum leprosum (fumo bravo o tabaquillo). Sus pelos coloridos de amarillo advierten a los depredadores sobre su capacidad urticante. La toma se hizo en la reserva ecologica de Olivos (Prov. Buenos Aires) Argentina. La foto se hizo modo automatico, primer plano. Nikon coolpix 3,200.

Eacles imperialis opaca BURMEISTER, 1878 Ficha

Taxonómica de la especie :

• Superfamilia : Bombycoidea
• Familia: Saturniidae BOISDUVAL, 1837
• Subfamilia : Ceratocampinae
• Género : Eacles HÜBNER, 1819
• Especie : imperialis DRURY, 1773
• Subespecie : opaca BURMEISTER, 1878

Eacles imperialis opaca, es una especie en la que sus orugas son de hábitos alimenticios polífagos y los adultos hacen su aparición en primavera luego de haber pasado el invierno en estado de pupa diapausante, saliendo se esta forma de dormancia a fines del mes de Octubre y mediados de Noviembre con un clima favorable a su desarrollo y proliferación.

Las hembras apareadas y fecundadas (mayores que los machos en cuanto a robustez y envergadura alar), desovan en plantas como el rosal o frutales como el manzano, el duraznero y el peral ; también lo hacen en frondosos árboles como los conocidos Plátano, Álamo y Palta (entre otros), de los que se alimentarán las futuras larvas luego de una gestación que varía entre los 12 y 15 días de realizada la puesta, teniendo en cuenta para ello una temperatura variable entre los 18º y 28º centígrados y una humedad relativa en promedio al 60%. Es característico en esta especie que sus hembras no hagan grandes desplazamientos en vuelo y que realicen sus desoves en puestas de manera agrupada e indistintamente en el envés y revés de las hojas de la planta elegida. Culminada la puesta y agotadas sus energías en gran parte, la polilla (que vive entre siete ocho días) sobrevivirá sin alimentación alguna, unos pocos días más (tal ves uno o dos) para morir habiendo dejado ya su descendencia, la que comenzará el ciclo nuevamente repitiendo el desarrollo hasta que sus orugas próximas a pupar y habiendo soportado 5 mudas de su cobertura corporal en este período, se enterrarán entre los 10 y 20 centímetros bajo tierra a la espera de la nueva transformación.

Lonomía oblicua WALKER, 1855

• Familia : Saturniidae BOISDUVAL, 1837
• Subfamilia : Cercophanidae
• Género : Lonomia
• Especie : oblicua WALKER, 1855

Oruga o gusano de fuego » Oruga o gusano de fuego especie que pertenece al tipo Lepidóptera de la familia Saturniidae- cuyo nombre científico es Lonomía oblicua Walker 1855. En la región Sur de Brasil y Noreste de Argentina (Provincia de Misiones), esta especie de gusano es conocida como « taturana », nombre que proviene del idioma de los indígenas tupy-guaraníes, quienes llamaban « tata-ranas » a estas orugas urticantes, expresión que significa « aquello que quema como el fuego ». Esta especie de insecto tenía como hábitat bosques nativos, y aunque los primeros accidentes se hayan registrado en la región Suroeste de Brasil, durante las décadas del ´60 y ´70, fue en el inicio del verano de 1989/90 cuando se observó la primera invasión de taturanas, que aparecieron en alrededor de 40 municipios de la región Oeste del estado de Santa Catarina y Noroeste del estado de Río Grande do Sul (región fronteriza con nuestras provincias de Corrientes y Misiones). En consecuencia, y desde su aparición en la región Oeste de Santa Catarina, la acción de la taturana ya ha causado accidentes hemorrágicos en más de 400 personas, de las cuales, por lo menos nueve de ellas perdieron la vida. Por otra parte, la mayoría de los accidentes con este tipo de gusanos – el 80% de los casos – se han producido en zonas rurales, aunque también es preocupante su presencia en zonas urbanas. Actualmente, las taturanas se encuentran diseminadas por los estados de Paraná, Santa Catarina y Río Grande do Sul. Cabe destacar, una vez más, que los estados mencionados poseen zonas fronterizas con nuestro país. Según el investigador Roberto Enrique Pinto Moraes, de la Escuela Superior de Agricultura Luis de Queiroz (ESALQ), de la Universidad de San Pablo (Brasil), la devastación de bosques nativos y la extinción de depredadores naturales son los motivos de la expansión de la taturana. Al respecto, dicho investigador explica que plantaciones y poblados se han instalado en lugares donde antes existía vegetación nativa, hecho que ha obligado a la taturana a adoptar los árboles frutales de las quintas como su nuevo hábitat. Otra razón que responde al aumento de la población del gusano y su aparición en nuevas regiones, es la extinción de uno o más de sus depredadores naturales. Ciertamente, su principal depredador es una mosca de la familia Tachinidae, quien deposita dentro de la taturana cinco o seis huevos, cuyas larvas, al nacer, se alimentan del cuerpo del gusano. Tampoco se detectó a ningún mamífero o ave que sea enemigo natural del gusano y que justifique la existencia de las cerdas urticantes, ya que ellas no protegen al gusano de ninguno de los depredadores conocidos. Por ello, se piensa que algunos de sus depredadores naturales estarían extinguidos. Según el especialista, entre los motivos de extinción de éstos se mencionan la deforestación y los agro-tóxicos lanzados en las plantaciones. La mariposa Las mariposas adultas poseen una coloración distintiva según su sexo. En la cara dorsal de sus alas, el macho tiene un tono amarillo fuerte, con rayas transversales oscuras. En tanto, las hembras muestran un tono castaño agrisado, con rayas oscuras que delimitan sus alas. Las mariposas son observadas en mayor cantidad en los meses más calurosos, y su lapso vital alcanza, aproximadamente, los diez meses. El ciclo biológico de esta especie fue estudiado en laboratorio, específicamente en el Centro de Investigaciones para Pequeñas Propiedades de la EPAGRI, en el estado de Santa Catarina. Dicho estudio arrojó, como resultado, los siguientes datos : los adultos tienen una longevidad promedio de siete días, período durante el cual las hembras desovan una media de 122 huevos. Desde que los huevos son depositados en las hojas y troncos de los árboles, hasta la fase adulta, las mariposas pasan por varias fases, pero en este género, solamente el gusano puede causar daño a las personas. Larva : miden de 6 a 7 cm de largo. Tienen el cuerpo revestido de cerdas ramificadas (similar a una rama de pino), dispuestas a lo largo del cuerpo, y a través de las cuales inoculan el veneno. Por lo general, su color es marrón claro con matices de verdes o marrón ocre, más tres franjas longitudinales de color castaño oscuro. Además, poseen una pequeña mancha blanca de contorno irregular, en el dorso del tercer segmento torácico. Estas orugas viven en grupo, y se alimentan de hojas durante la noche. Así agrupadas, imitan la superficie del contorno del árbol, descendiendo en bloque hacia la base del tronco donde reposan durante el día. Durante la fase de transformación de gusano a capullo, suelen ubicarse próximas al suelo, a la vez que buscan las hojas secas. Y es precisamente en este momento, cuando provocan la mayor cantidad de accidentes. Los capullos o « pupas » son de color marrón oscuro, y mantenienen el diseño de franjas longitudinales en su dorso. Estos gusanos fueron encontrados en árboles silvestres como el cedro, higuera silvestre, ariticum y aroeira, y en árboles frutales como el ciruelo, peral, durazno y el árbol de la palta. Ellas pueden vivir un período que varía de 3 a 6 meses, lapso que depende de la oferta de alimento y de las variaciones climáticas. El Peligro Los peligros que tales orugas le significan al hombre, surgen cuando éste entra en contacto con las cerdas ubicadas en el dorso del gusano, ocasión en la que se produce la inoculación del veneno que entra directamente al torrente sanguíneo humano, desencadenando una reacción fibrinolítica, esto es, la destrucción del fibrinógeno (proteína presente en la sangre), que una vez destruido, inhibe la formación de la fibrina, sustancia responsable de la coagulación sanguínea. Consecuentemente, y merced a la acción del veneno, las personas sufren un proceso hemorrágico de naturaleza sistémica. El primer síntoma después de ocurrido el episodio, es un fuerte dolor con sensación de quemazón, seguido de enrojecimiento de la zona afectada, hinchazón, calor, malestar general, náuseas y vómitos. Las manifestaciones hemorrágicas pueden aparecer entre 8 a 72 horas después del hecho. Las más comunes se presentan a través de manchas oscuras diseminadas por todo el cuerpo (hematomas), pérdidas de sangre por nariz, encías, orina y en heridas recientes. Los casos más graves pueden evolucionar hasta provocar insuficiencia renal aguda y finalmente, la muerte. Autor : Teniente Primero Julián Ernesto Sccasso Losa.

Molippa eophila DOGNIN, 1919

Ficha taxonómica de la especie :
• Superfamilia : Bombycoidea, LATREILLE, 1802
• Familia : Saturniidae, BOISDUVAL, 1837
• Subfamilia : Hemileucinae, GROTE & ROBINSON, 1866
• Tribu : Hemileucini, GROTE & ROBINSON, 1866
• Género : Molippa WALKER, 1855
• Especie : eophila DOGNIN, 1919

Es la mas pequeña Molippa, no conocida fuera de Argentina según B. Wenczel-Suiza. Foto capturada en Villa Amancay – Provincia de Cordoba, Febrero 2010. Nunca la habia visto no debe ser abundante, esta en el piso afectada por un insecticida debido auna ola de mosquitos y efimeras, que invadieron la galeria de mi casa atraidos por luz fluorescente.

Rothschildia maurus BURMEISTER, 1880

Ficha taxonómica de la especie :
• Superfamilia : Bombycoidea, LATREILLE, 1802
• Familia : Saturniidae BOISDUVAL, 1837
• Subfamilia : Saturniinae
• Tribu : Attacini
• Género : Rothschildia GROTE, 1896
• Especie : Rothschildia maurus BURMEISTER, 1880

Noctuidae

Autographa gamma LINNAEUS, 175

• Familia : Noctuidae
• Sub. Fam. : Plusiinae
• Género : Autographa
• Especie : Autographa gamma LINNAEUS, 1758

Es una mariposa de 4 cm. Período de vuelo mes IV-X en varias generaciones. Se trata de un Lepidóptero Noctuido de características semejantes a la gardama con ligeras diferencias en la oruga. Los huevos son de forma semiesférica, color blanquecino con un tono azul grisáceo. La larva tiene la cabeza verde, presentando a veces un trazo o mancha negra a ambos lados. El cuerpo de la oruga va siendo más grueso a medida que retrocedemos por el abdomen. La línea media dorsal es de un color verde más oscuro que el del cuerpo y va franqueada por varias líneas finas, blancas y sinuosas. Las líneas laterodorsales son finas, blancas y sinuosas. Las líneas laterales son blancas y nítidas. Los estigmas son blancos con peritremo negro. Longitud de 30 a 40 mm. Las orugas de actividad nocturna, con daños muy poco apreciables, es el mejor momento para efectuar un tratamiento fitosanitario. La crisálida es de forma ahusada. Color negro o marrón muy oscuro El extremo de las alas y la probóscide forman una protuberancia sobre los segmentos abdominales. Para crisalidar, las orugas tejen un delgado capullo de seda, aprovechando cualquier pliegue de una hoja o en las hierbas, pasando en este estado de 5 a 15 días según la temperatura. El adulto posee tres crestas dorsales peludas. El ala anterior posee una coloración a base de manchas grises, negras, pardas y ocráceas. Presentan como elemento característico distintivo una mancha blanca con forma de la letra griega gamma en cada ala. Las alas posteriores son de color pardo ocre en su base y marrón o negro en su extremo, siendo oscuras las venaciones. Las antenas son filiformes. Alcanzan 40 a 45 mm de longitud (CARTER, 1984). Los daños se manifiestan por agujeros en las hojas de poca consideración pero abundantes, En la tercera fase de su crecimiento y última, empiezan a comer de día y de noche, pudiendo arrasar en unos pocos días una plantación entera en esta última fase de su crecimiento, son mucho más resistentes a los insecticidas. Se alimenta en la fase de oruga, de plantas silvestres y cultivadas, ocasionando daños de consideración en cultivos de los que cabe destacar, alubias (Phaseorus), alfalfa (M. sativa), cebollas (Alium cepa), coles (Brassica), lino (Linum), patatas (S. tuberosum), remolacha (Beta vulgaris) y tabaco (S. tabacum), maíz, se alimenta de toda clase de leguminosas (AIZPURUA, 1985). Las larvas (orugas) devoran las hoja. Ese insecto está en Argentina, Uruguay y Brasil, sobre Brassicaceae, Chenopodiaceae, Convolvulaceae, Fabaceae y Linaceae. Dr. Roberto Lecuona

Anticarsia gemmatalis HÜBNER, 1818

• Familia : Noctuidae
• Subfamilia : Ophiderinae
• Género : Anticarsia HÜBNER, 1818
• Especie : gemmatalis HÜBNER, 1818

« Oruga de las leguminosas »

Características – Daños: esta especie es de importancia en las áreas sojeras del norte del Argentina – NOA y NEA. En el resto de la región pampeana provoca ataques intensos, pero en forma ocasional (norte de la zona núcleo). La oruga de las leguminosas llega a medir de 35 a 40 mm de longitud y se presenta en dos formas : una de color verde intenso y las otras de color oscuro a negro, con una serie de líneas blancas longitudinales. Una larva llega a consumir entre 100 y 100 cm2 de hoja de soja. también puede consumir total o parcialmente vainas, que aún no formaron granos. Los adultos son mariposas de hábito nocturno, de color marrón a azulado oscuro y tiene gran capacidad de vuelo, migrando desde las áreas tropicales y subtropicales a las templadas durante el verano. Las larvas y pupas invernantes provenientes de las infestaciones de Marzo – Abril mueren durante el invierno por la baja tolerancia al frío.

Rachiplusia nu GUÉNÉE, 1852 Isoca medidora en Argentina

• Familia : Noctuidae
• Subfamilia : Plusinae BOISDUVAL, 1829
• Tribu : Plusinii BOISDUVAL, 1829
• Género : Rachiplusia HAMPSON, 1913
• Especie : nu GUÉNÉE, 1852
• Nombre vulgar : cuncunilla verde del fréjol

Esta especie es considerada como una de las plagas más frecuentes en cultivos de leguminosas y su importancia es variable según el cultivo que dañe (ARRETZ et al,1985). Las hembras, de vuelo diurno, ponen en forma aislada huevos estriados de color blanco en el envés de las hojas y en los tallos. Las larvas de color verde claro consumen follaje y son semi medidoras, al tener un par menos de patas abdominales, ya que solo posee tres pares de patas abdominales. Es un insecto extremadamente polífago. Sus hospederos : girasol, soja, alfalfa, trébol ; en el verano : arveja, papa, tomate, poroto, zapallo,espinaca, alimentándose de hojas, brotes y flores y varias malezas. Descripción:envergadura alar : 28 a 34 mm. Enemigos naturales : Cotesia sp.: avispa de 0,5 mm de largo que parasita a la oruga a travez de sus larvas. Campoletis grioti : igual que la anterior pero un poco mas grande. Copidosoma truncatellum : avispa que deposita los huevos en los huevos de Rachiplusia. Cuando la oruga prepara el capullo para empupar, muere porque las avispitas consumen su cuerpo. Voria sp. : es una mosca que pone los huevos en la oruga de Rachiplusia, la que muere cuando la consumen las larvas de la mosca. Tiene en el dorso del tórax un prominente mechón de escamas erizadas. Las alas anteriores son grisáceas con tonalidades castañas y con dos bandas mas claras hacia el extremo y una mancha plateada en el tercio inferior. El segundo par de alas es de coloración anaranjada. La espiritrompa es muy larga y los ápices alares tambien se proyectan.

Aspectos biológicos : Los adultos, de hábitos nocturnos y crepusculares, depositan los huevos en forma aislada en ambas caras de las hojas, sujetos por medio de un cemento. A lo largo de su vida adulta de alrededor de 20 días la hembra coloca entre 70 y 1600 huevos. Estos son de contorno circular y planos, de 0,5 mm. de diámetro. Recién puestos muestran una coloración blanco amarillenta y hacia el final de la incubación es grisácea. Daños : Es un insecto desfoliador. En estado de larva es de color verde claro con líneas blancas a los costados. Las larvas de los primeros estadios roen las hojas, las de mayor desarrollo en cambio consumen la totalidad de la misma respetando las nervaduras. Por lo general el ataque comienza por las hojas inferiores, La pupa posee capullo compuesto de dos capas que llevan adosadas restos de hojas, en vista lateral se ve abultada en la región medio ventral. Los años de sequía de primavera, favorecen su multiplicación, factor que retrasa la aparición de hongos patógenos (Pandora gammae (Weiser) Humber ) que son los más efectivos agentes de control biológico de la Rachiplusia nu (Entomopathogenic fungus Pandora gammae (Weiser) Humber (Zygomycetes: Entomophthorales), in the « soybean loopers » complex (Lepidoptera : Plusiinae) in Argentina). Ortiz D. y col. – Universidad de Lomas de Zamora.

Yponomeutidae

Atteva Punctella CRAMER, 1781

Ficha taxonómica de la especie :
• Familia : Yponomeutidae
• Subfamilia : Attevinae
• Género : Atteva WALKER, 1854
• Especie : Atteva punctella CRAMER, 1781
• Nombre comun : Oruga del Ailanthus (Polilla armiño en el hemisferio norte)

Es un polilla común en el Estados Unidos. Se cree que es nativa del Sur Florida y de los trópicos de América, el hábitat original de la planta huesped el Arbol del Paraíso (Simarouba glauca).
Otro árbol llamado árbol del cielo (Ailanthus altissima), originario de China, ha sido ampliamente introducido y Atteva punctella ha saltado a esta nueva planta huésped (de ahí su nombre común, Oruga del Ailanthus). La polilla no sobrevive a los inviernos fríos, pero migra al norte cada año por lo que se ve comúnmente en verano en todo el continente, EE.UU. y en ocasiones Canadá oriental.
El adulto visitas flores, es diurna siendo un polinizador. Atteva punctella puede ser una plaga en los viveros, aunque rara vez ocasiona graves daños. Las larvas hacen nidos comunitarios en la planta huésped tejiendo capullos amplios.
El Ailanthus altissima (arbol del cielo) se considera un especies invasora, aunque todavía se vende en viveros, es una de las especies que crecen en ambientes contaminados.

(à suivre)

Sur les Lépidoptères d’Argentine, voir les livres :

• CANALS, Gustavo R., Mariposas bonaerenses, ed. Lola, 1999, 150 p.
• CANALS, Gustavo R., Mariposas de Misiones, ed. Lola, 2003, 492 p.
• VARGA, Andrés E. , Mariposas Argentinas. Guía práctica e ilustrada para la identificación de las principales mariposas diurnas y nocturnas de la Provincia de Buenos Aires, avril 2000.

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Bonjour ,

Entomologiste amateur, habitant l’Eure-et-Loir, j’essaie de contribuer à l’inventaire des papillons de ce département et de le partager sur mon site qui est en construction. Passionné par les papillons de nuit de Guyane, je me permets de vous soumettre la photo d’un papillon de Guyane que je n’arrive pas à identifier : je penche pour un Dioptinae sans aucune certitude …

Prélèvement effectué :
Lampe UV, 23h15, Forêt primaire
PK13.5, Route Plateau des Mines, St Laurent-du-Maroni
13 octobre 2009
Merci d’avance pour toute aide !
Entomologiquement vôtre
Philippe

Un second papillon de nuit de Guyane française pour lequel je n’ai aucune idée quant à sa famille et son nom :

Forêt primaire, PK13.5, Route Plateau des Mines, St Laurent-du-Maroni, 13 octobre 2009, 00h15.

N’hesitez pas à me contacter si besoin
Merci d’avance pour toute aide apportée
Amicalement
Philippe

Contact :

Email : philippe.thomas2@wanadoo.fr
N° téléphone :  06 21 09 83 26
Site Web : http://www.passions-papillons.com/

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Campement dans la vallée d’Aram-Kungey (3000 m) dans le Transalaï (vue vers le Nord et la vallée de la Kyzyl-Suu). Juillet 2008. Photo : J. Marquet

Jacques Marquet

(Cliquer sur cartes & photos pour un meilleur effet !)

En juin et juillet 2008, l’ALF avait organisé un voyage au centre de la Kirghizie et surtout en Alaï et Transalaï (4 participants). L’agence Horizon Travel en avait assuré la logistique à la satisfaction de tous. Le soleil était au rendez-vous chaque jour et les papillons très nombreux. Nous présentons ci-dessous une relation photographique (tardive !) de cette expédition en y joignant la liste des lépidoptères observés (classés par famille, avec indication des localités et des altitudes). Photos et listes sont de Jacques Marquet.

Le centre de la Kirghizie : Dolon Pass, Lac Song-Kül, Kyzyl-Art Pass (20 au 30 juin)

Papilionidae (juin & juillet 2008)

Papilio machaon centralis STAUDINGER, 1886 – Karakol, 1800 m.
Parnassius boedromius sokolovi KREUZBERG, 1989 – Alabel Pass, 3400 m.
Parnassius patricius uzungyrus WEISS, 1979 – Alabel Pass, 3400 m.
Parnassius charltonius romanovi GRUM-GRSHIMAILO, 1885 – Aram-Kungei, Transalaï, 3400 m.
Parnassius apollonius apollonius EVERSMANN, 1847 – Kekemeren, 2000 m.
Parnassius actius dubitabilis VÉRITY, 1910 – Dolon Pass, 2900 m.
Parnassius actius flora BANG-HAAS, 1915 – Taldyk Pass, 3600 m.
Parnassius delphius namanganus ELWES, 1886 – Alabel Pass, 3400 m.
Parnassius delphius albulus HONRATH, 1889 – Dolon Pass, 3200 m.
Parnassius staudingeri illustris GRUM-GRSHIMAILO, 1888 – Aram-Kungei, Trans Alaï, 3400 m.
Parnassius staudingeri infernalis ELWES, 1886 – Taldyk Pass, 3600 m.
Parnassius jacquemontii variabilis STICHEL, 1907 – Taldyk Pass, 3600 m ; Aram-Kungei, Trans Alaï, 3400 m.
Parnassius tianschanicus insignis STAUDINGER, 1886 – Taldyk Pass, 3600 m.

Pieridae (juin & juillet 2008)

Colias erate erate ESPER, 1808 – Kyzyl-Eshme, Alaï, 3000 m ; Toktogul, 1500 m ; Osh, 2000 m ; Kyz-Art Pass, 2400 m ; Terek Murdas, 2000 m ; Alabel Pass, 2100 m.
Colias alta alta STAUDINGER, 1886 – Kyzyl-Eshme, Alaï, 3000 m ; Taldyk Pass, 3200 m.
Colias eogene elissa GRUM-GRSHIMAILO, 1890 – Aram-Kungei, Trans Alaï, 3400 m.
Colias staudingeri pamira GRUM-GRSHIMAILO, 1890 – Aram-Kungei, Trans Alaï, 3400 m ; Kekemeren, 2000 m.
Colias thisoa aeolides GRUM-GRSHIMAILO, 1890 – Lac Song-Köl, 3000 m ; Dolon Pass, 2900 m ; Taldyk Pass, 3600 m.
Colias romanovi GRUM-GRSHIMAILO, 1885 – Kekemeren, 2000 m ; Kyzyl-Eshme, Alaï, 3000 m.
Colias cocandica cocandica ERSCHOFF, 1874 – Alabel Pass, 3200 m ; Lac Song-Köl, 3000 m.
Colias cocandica pljushtchi VERHULST, 2000 – Dolon Pass, 3200 m.
Pieris rapae debilis ALPHERAKY, 1889 – Kyzyl-Eshme, Alaï, 2800 m ; Orto-Tokoi 1500 m.
Pieris napi bryonides SHELJUZHKO, 1910 – Dolon Pass, 2600 m.
Aporia crataegi crataegi LINNAEUS, 1758 – Kekemeren, 2000 m.
Pontia daplidice daplidice LINNAEUS, 1758 –Alabel Pass, 2100 m ; Dolon Pass, 2900 m ; Terek-Murdas, 2000 m ; Kyz-Art Pass, 2400 m.
Pontia callidice amaryllis HEMMING, 1933 – Kyzyl-Eshme, Alaï, 3000 m ; Taldyk Pass, 3600 m ; Alabel Pass, 3200 m.
Metaporia leucodice illumina GRUM-GRSHIMAILO, 1890 – Dolon Pass, 2200 m ; Alabel Pass, 2100 m.

Kekemeren (2 au 4 juillet)

Campement entre Kekemeren et Alabel Pass. Juin 2008. Photo : J. Marquet

Satyridae (juin & juillet 2008)

Ussuria eversmanni eversmanni EVERSMANN, 1847  – Alabel Pass, 2100 m ; Kekemeren, 2000 m ; entre Aral et Kekemeren, 1800 m.
Melanargia parce parce STAUDINGER, 1882 – Kekemeren, 2000 m ; Kyz-Art Pass, 2400 m.
Coenonympha nolckeni nolckeni ERSCHOFF, 1874 – Kekemeren, 2000 m ; Alabel Pass, 2100 m.<
Coenonympha mahometana mahometana ALPHERAKY, 1881 – Dolon Pass, 2200 m, 2900 m.
Coenonympha sunbecca sunbecca EVERSMANN, 1843 – Dolon Pass, 3200 m, 2900 m ; Kyz-Art Pass, 2400 m ; Taldyk Pass, 3600 m.
Coenonympha caeca caeca STAUDINGER, 1886 – Alabel Pass, 3400 m.
Coenonympha pamphilus pamphilus LINNAEUS, 1758 – Karaköl, 1800 m.
Erebia turanica susamyra LUKHTANOV, 1994 – Kekemeren, 2000 m.
Erebia meta meta STAUDINGER, 1886 – Taldyk Pass, 3600 m.
Erebia mopsos mopsos STAUDINGER, 1886 – Alabel Pass, 3400 m.
Erebia mopsos melanops CHRISTOPH, 1889 – Dolon Pass, 2600 m, 2900 m.
Erebia kamulka kamulka ALPHERAKY, 1881 – Dolon Pass, 2900 m.
Erebia mongolica mongolica ERSCHOFF, 1888 – Dolon Pass, 3200 m.
Erebia sokolovi sokolovi LUKHTANOV, 1990 – Alabel Pass, 3200 m.
Erebia sokolovi severa CHURKIN & TUZOV, 2000 – Lac Song-Köl, 3000 m.
Erebia radians radians STAUDINGER, 1886 – Taldyk Pass, 3600 m ; Aram-Kungei, Trans Alaï, 3400 m.
Paralasa jordani roxana GRUM-GRSHIMAILO, 1887 – Kyzyl-Eshme, Alaï, 3000 m.
Karanasa josephi josephi STAUDINGER, 1882 – Kyzyl-Eshme, Alaï, 3000 m.
Karanasa josephi dissoluta STAUDINGER, 1886 – Aram-Kungei, Trans Alaï, 3400 m.
Karanasa wilkinsi robusta AVINOV & SWEADER, 1951 – Aram-Kungei, Trans Alaï, 3400 m.
Hyponephele naricina naricina STAUDINGER, 1870 – entre Aral et Kekemeren, 1800 m.
Hyponephele lupina intermedia STAUDINGER, 1886 – entre Aral et Kekemeren, 1800 m.
Hyponephele dysdora dysdora LEDERER, 1869 – entre Aral et Kekemeren, 1800 m ; vallée Issyk-Kul, 2300 m.
Hyponephele naubidensis naubidensis ERSCHOFF, 1874 – Kyzyl-Eshme, Alaï, 3000 m ; Kekemeren, 2000 m ; entre Caek et Aral, 1600 m.
Hyponephele hilaris hilaris STAUDINGER, 1886 – Aram-Kungei, Trans Alaï, 3400 m ; Daroot-Korgon, Alaï, 3000 m ; entre Aral et Kekemeren, 1800 m.
Hyponephele haberhaueri STAUDINGER, 1886 – entre Aral et Kekemeren, 1800 m ; entre Caek et Aral, 1600 m.
Hyponephele przhewalskyi DUBATOLOV, SERGEEV & ZHDANKO, 1994 – Kekemeren 2000 m ; Rivière Suusamyr, 2400 m.
Chazara heydenreichi nana RÜHL, 1895 – Taldyk Pass, 2300 m ; Kyzyl-Eshme, Alaï, 2800 m.
Charaza kaufmanni obscurior STAUDINGER, 1887 – Karaköl 1800 m ; entre Caek et Aral, 1600 m.
Chazara briseis fergana STAUDINGER, 1886 – Kekemeren, 2000 m ; Rivière Suusamyr, 2400 m ; entre Aral et Kekemeren, 1800 m ; Osh, 2000 m.
Chazara enervata enervata STAUDINGER, 1881 – Rivière Suusamyr, 2400 m.
Pseudochazara turkestana turkestana GRUM-GRSHIMAILO, 1893 – entre Aral et Kekemeren, 1800 m ; entre Caek et Aral, 1600 m ; Bajak, 2100 m.
Pseudochazara panjshira alaina BOGDANOV, 2004 – Kyzyl-Eshme, Alaï, 2800 m.
Arethusana arethusa heptapotamica STAUDER, 1924 – Karaköl 1800 m.
Hipparchia autonoe orchomenus FRUHSTORFER, 1911 – Kekemeren, 2000 m ; Rivière Suusamyr 2400 m ; entre Caek et Aral, 1600 m.
Satyrus ferula alaica STAUDINGER, 1886 – Kyzyl-Eshme, Alaï, 2800 m.
Satyrus ferula altaica GRUM-GRSHIMAILO, 1893 – Kekemeren, 2000 m .

À l’Ouest : Alabel Pass & le Lac Toktogul (5 au 14 juillet)

Nymphalidae (juin & juillet 2008)

Neptis rivularis ludmilla HERRICH-SCHÄFFER, 1856 – Kekemeren, 2000 m ; Alabel Pass, 2100 m.
Nymphalis xanthomelas hazara WYATT & OMOTO, 1966 – Kekemeren, 2000 m.
Aglais urticae urticae LINNAEUS, 1758 – Taldyk Pass, 3600 m.
Cynthia cardui cardui LINNAEUS, 1758 – entre Aral et Kekemeren, 1800 m.
Issoria lathonia lathonia LINNAEUS, 1758 – Alabel Pass, 3400 m.
Argynnis pandora pandora D. & SCHIFFERMÜLLER, 1775 – Kekemeren, 2000 m.
Argynnis aglaja gigasvitatha VÉRITY, 1935 – Kyzyl-Eshme, Alaï, 3000 m ; Taldyk Pass, 3600 m.
Argynnis niobe orientalis ALPHERAKY, 1881 – Kekemeren 2000 m ; Dolon Pass, 2900 m.
Argynnis adippe tianschanica ALPHERAKY, 1881 – Alabel Pass, 2100 m ; Osh, 2000 m.
Melitaea sibina sibina ALPHERAKY, 1881 – Kekemeren 2000 m ; entre Aral et Kekemeren, 1800 m ; entre Caek et Aral, 1600 m.
Melitaea didyma turkestanica SHELJUZHKO, 1929 – entre Aral et Kekemeren 1800 m ; Bajak, 2100 m ; entre Caek et Aral, 1600 m.
Melitaea pallas pallas STAUDINGER, 1886 – Kekemeren 2000 m ; Taldyk Pass, 3600 m ; Kyzyl-Eshme, Alaï, 3000 m.
Melitaea ala ala STAUDINGER, 1881 – Kekemeren 2000 m.
Melitaea solona pletnevi CHURKIN, KOLESNICHENKO & TUZOV, 2000- Alabel Pass, 3400 m ; Dolon Pass, 3200 m.
Melitaea asteroida ludmilla CHURKIN, KOLESNICHENKO & TUZOV, 2000 – Alabel Pass, 3400 m ; Aram-Kungei, Trans Alaï, 3400 m.
Melitaea fergana fergana STAUDINGER, 1882 – Aram-Kungei, Trans Alaï, 3400 m ; Kekemeren 2000 m.
Melitaea minerva minerva STAUDINGER, 1881 – Dolon Pass, 2900 m.
Brenthis hecate alaica STAUDINGER, 1886 – Kekemeren 2000 m ; Kyzyl-Eshme, Alaï, 3000 m.
Clossiana hegemone hegemone STAUDINGER, 1881 – Dolon Pass, 3200 m ; Aram-Kungei,Trans Alaï, 3400 m.
Boloria generator generator STAUDINGER, 1886 – Dolon Pass, 2900 m ; Taldyk Pass, 3600 m ; Aram-Kungei,Trans Alaï, 3400 m.
Euphydryas asiatica alexandrina STAUDINGER, 1887 – Dolon Pass, 3200 m, 2900 m, 2200 m.

Alaï & Transalaï (15 au 24 juillet)

Lycaenidae (juin & juillet 2008)

Nordmannia acaudata acaudata STAUDINGER, 1901 – Alabel Pass, 2100 m ; entre Caek et Aral, 1600 m ; entre Aral et Kekemeren 1800 m.
Lycaena phlaeas phlaeas LINNAEUS, 1761 – Dolon Pass, 3200 m ; Alabel Pass, 3200 m.
Lycaena infera kekemerana LUKHTANOV, 2000 – entre Caek et Aral, 1600 m ; entre Aral et Kekemeren 1800 m
Lycaena splendens splendens STAUDINGER, 1881 – Dolon Pass, 2900 m, 2200 m.
Lycaena solskyi fulminans GRUM-GRSHIMAILO, 1888 – Kyzyl-Eshme, Alaï, 3000 m.
Glaucopshyche alexis alexis PODA, 1761 – Kekemeren, 2000 m.
Scolitantides orion johanseni WNUKOWSKI, 1934 – Kyzyl-Eshme, Alaï, 3000 m.
Maculinea cyanecula naruena COURVOISIER, 1911 – Kekemeren, 2000 m ; Bajak, 2100 m.
Maculinea alcon imitator TUZOV, 2000 – Kekemeren, 2000 m.
Plebeius argus nushibi ZHDANKO, 2000 – Kekemeren, 2000 m ;vers Kyz-Art Pass, 2400 m.
Plebeius idas naruena COURVOISIER, 1913 – Dolon Pass, 3200 m.
Eumedonia eumedon eumedon ESPER, 1780 – Dolon Pass, 2900 m, 2200 m ; Kekemeren, 2000 m.
Eumedonia persephatta minuta GRUM-GRSHIMAILO, 1890 – Kekemeren, 2000 m ; Taldyk Pass, 3600 m ; Dolon Pass, 2200 m.
Aricia agestis agestis DENIS & SCHIFFERMÜLLER, 1775. – Kiz-Art Pass, 2400 m ; Jalalabad, 1500 m.
Aricia artaxerxes scythissa NEKRUTENKO, 1985 – Aram-Kungei,Trans Alaï, 3400 m ; Kekemeren, 2000 m ; Kyz-Art Pass, 2400 m.
Agriades pheretiades pherecydes GRUM-GRSHIMAILO, 1890 – Alabel Pass, 3200 m, 3400 m.
Agriades pheretiades tekessana ALPHERAKY, 1897 – Dolon Pass, 2600 m, 2900 m, 3200 m.
Agriades pheretiades pherutulus STAUDINGER, 1886 – Aram-Kungei,Trans Alaï, 3400 m ; Taldyk Pass, 3600 m.
Cyaniris semiargus semiargus ROTTEMBURG, 1775 – Kekemeren, 2000 m ; Alabel Pass, 2200 m.
Polyommatus icarus bienerti BALINT, 1993 – Karaköl, 1800 m ; Terek Murdas, 2000 m ; Orto-Tokoi, 1500 m ; Kyz-Art Pass, 2400 m.
Polyommatus icadius candidus ZHDANKO, 2000 – Kekemeren, 2000 m.
Polyommatus venus venus STAUDINGER, 1886 – Aram-Kungei,Trans Alaï, 3400 m.
Polyommatus venus wiskotti COURVOISIER, 1910 – Dolon Pass, 2900 m ; Kekemeren,2 000 m ; Lac Song Kol, 3000 m ; Alabel Pass, 3200 m .
Polyommatus sarta sarta ALPHERAKY, 1882 – Kekemeren 2000 m ; entre Aral et Kekemeren 1800 m ; entre Caek et Aral, 1600 m.
Polyommatus sarta takoi CHURKIN – Orto-Tokoi, 1500 m.
Polyommatus cyane cyane EVERSMANN, 1837 – Dolon Pass, 3200 m.
Polyommatus amandus amandus SCHNEIDER, 1792 – Kekemeren, 2000 m ; vers Alabel Pass, 2100 m ; entre Aral et Kekemeren, 1800 m.
Polyommatus thersites thersites CANTENER, 1835 – Kekemeren, 2000 m.
Polyommatus rutilans rutilans STAUDINGER, 1886 – Kyzyl-Eshme, Alaï, 3000 m.
Agrodiaetus actinides actinides STAUDINGER, 1886 – Kyzyl-Eshme, Alaï, 3000 m ; Dolon Pass, 3200 m.
Agrodiaetus ripartii ripartii FREYER, 1830 – Rivière Suusamyr, 2400 m.
Agrodiaetus phyllides phyllides STAUDINGER, 1886 – Osh, 2000 m.
Agrodiaetus iphigenides iphigenides STAUDINGER, 1886 – Kyzyl-Eshme, Alaï, 3000 m.
Agrodiaetus juldusus juldusus STAUDINGER, 886 – entre Aral et Kekemeren, 1800 m.

Riodinidae (juin & juillet 2008)

Polycaena tamerlana tamerlana STAUDINGER, 1886 – Alabel Pass, 3200 m, 3400 m.

Zygaenidae (juin & juillet 2008)

Zygaena cocandica ERSCHOFF, 1874- Kyzyl-Eshme, Alaï, 3000 m.
Zygaena purpuralis smirnovi CHRISTOPH, 1884 – Kyz-Art Pass, 2400 m.

Syntomidae (juin & juillet 2008)

Syntomis (Amata) bactriana ERSCHOFF, 1874 – Entre Caek et Aral, 1600 m.

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En outre, une curieuse fleur :

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Pourrait-il s’agir d’une forme déjà décrite ?

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Nous présentons deux méthodes, la première pour des papillons séchés, la seconde pour des lépidoptères que l’on souhaite garder « frais » pour l’étalage.

On notera au préalable

- qu’il faut proscrire l’introduction de feuilles d’arbres ou d’autres substances humidifiées (rondelles de carottes, de pommes de terre, etc.) dans la boîte de stockage : elle accélère l’apparition des moisissures et accroît le risque de pourrissement. L’ajout de feuillage n’est justifié qu’en prévision d’un étalage sur place à 24 ou 48 h.

- Les boîtes seront hermétiques et/ou placées hors de portée des fourmis. Lors de l’aération de la boîte (voir méthode 1.), il faudra toujours se méfier d’une invasion de fourmis capables d’envahir la boîte et de ravager irrémédiablement les papillons en moins de quelques heures.

Méthode 1 : conservation des spécimens à sécher

La conservation s’opère en pochettes de papier cristal rangées dans une boîte hermétique. Les bêtes devant sécher, il faut aérer les pochettes remplies les premiers jours (sans sortir les bêtes des pochettes cristal) en ouvrant le couvercle de la boîte le soir, le temps du dîner. Gare alors aux fourmis !

Les recommandations de Bernard Turlin affinent la méthode : elles réduisent le nombre de pochettes, interdisent moisissure et pourrissement, calent confortablement les spécimens et évitent les risques de bris d’antennes pendant les voyages chaotiques. Nous l’illustrons par quelques photos.

Matériel à préparer avant le voyage :

1. Une boîte de stockage parallélépipédique (du type Monoprix 21 x 15 x 10 cm). (fig. 1)
2. Des pochettes en papier cristal (6 x 10 cm). (fig. 2)
3. Des feuilles de papier hygiénique découpées (5,7 x 9,7 cm) (fig. 3). Là réside l’astuce : elles formeront une cloison permettant de disposer les papillons de chaque côté en les décalant. En séchant, les insectes gaufrent le papier, s’y constituant un « logement ». Une pochette contiendra 2 ou 3 Parnassius, 2 ou 3 Pieridae, 6 lycènes, etc.
4. Des feuilles intercalaires de papier blanc adaptées aux dimensions de la boîte de stockage (soit 19 x 13 cm si l’on choisit la boîte présentée en 1.).
5. Des compresses (11 x 0 x 0,5 cm ou en 19 X 13 si on en trouve) pour séparer les collectes. (fig. 4)

Après une chasse :

1. On opère un premier tri : les lycènes, les Satyrides, les Parnassius, etc. ; ce sera plus pratique pour le ramollissement ultérieur (sur les photos, les lycènes sont d’un côté et les Satyres de l’autre, il vaut mieux ranger par genre).
2. On dispose une couche de compresses dans le fond de la boîte de stockage.
3. On place les papillons dans les pochettes cristal cloisonnées comme expliqué plus haut. (fig. 5 & 6).
4. On installe ces pochettes correspondant à la première chasse de manière homogène, en les empilant simplement.
5. Sur la dernière pochette, on superpose la feuille de papier adaptée aux dimensions internes de la boîte de stockage. On aura inscrit préalablement sur cette feuille les données (lieu, altitude, date, etc.) de cette première chasse. (fig. 7)
6. Et l’on termine par quelques compresses qui supporteront la future chasse. (fig. 8)
7. En attendant cette seconde collecte, la boîte est loin d’être remplie : la garnir de coton (cardé très pratique car léger) pour que la pile de pochettes ne bringuebale pas. Après la chasse suivante, on réédite le modus operandi en veillant à maintenir le volume nécessaire de coton cardé jusqu’au couvercle de la boîte.

Ne pas oublier d’aérer la boîte : sans toucher aux « couches anciennes », on entrouvrira la boîte le soir, après avoir rangé la chasse du jour, de manière à favoriser la dessiccation. Gare aux fourmis si l’on ne surveille pas ! Ne jamais faire sécher les pochettes au soleil : cela compliquerait voire interdirait l’étalage.

Méthode 2 : conservation de spécimens « frais » avec le chlorocrésol

Le chlorocrésol (fig. 9) est censé conserver l’état de fraîcheur des captures. Il ne faut pas recourir aux « cloisons » citées plus haut qui absorbent l’humidité de la bête. Bien qu’en conditionnement étanche, l’humidité interne du papillon ne provoquera pas des moisissures et de pourrissement grâce au produit.

Matériel à préparer avant le voyage :

1. Du chlorocrésol. Ce produit est en vente on-line chez BioQuip.  Attention ! Parce qu’il s’agit d’un produit dangereux (à manier avec précautions, voir ci-dessous), il ne peut être expédié en France (et en Europe). Il faudra l’acheter aux États-Unis.
2. Des papillotes de format triangulaire en papier cristal adaptées à la taille des spécimens.
3. Des pochettes hermétiques à fermeture Ziploc – celles de Monoprix (Albal) (20 x 17,5 utile) ont ma préférence (fig. 10). Elles sont un peu épaisses, très hermétiques, point essentiel, longtemps réutilisables et à excellent zip. Il en existe d’autres, que je ne recommande pas, plus fines, un peu moins solides, assez hermétiques et seulement quand elles sont neuves.
4. Des boîtes de stockage étanches (du même type que les précédentes).

Méthode sur le terrain :

1. On insère un papillon par papillote.
2. On place toutes les pochettes triangulaires d’une même chasse dans une pochette plastique étanche à fermeture ziploc dont on aura vérifié l’étanchéité.
3. Puis (opération à faire à l’air libre) : on verse, sans toucher directement le produit, 1/2 cuillère à 1 cuillère de chlorocrésol selon le nombre de captures insérées dans cette pochette ziploc (et éventuellement un numéro correspondant à la chasse en question : voir ci-dessous). On chasse l’air résiduel sans écraser le contenu avant de refermer le zip. Ne pas ajouter de feuilles d’arbre (ou autre substance ou matériau) sous prétexte de conservation « humide » : le chlorocrésol s’en charge.
4. On pourra, bien sûr, le lendemain ouvrir la pochette pour ajouter des nouvelles bêtes. Ce que je déconseille : outre la toxicité du produit, la réouverture du sachet en diminuerait l’efficacité. C’est aussi pourquoi, mieux vaut ne pas disposer les papillotes directement dans la boîte de stockage qu’il faudrait alors ouvrir trop souvent. On aura compris qu’il n’est pas question d’aérer les bêtes ainsi conservées.
5. Une fois remplie et refermée, la pochette plastique est disposée dans une boîte de stockage elle-même étanche. Moyennant ces précautions, l’utilisation du chlorocrésol est sans danger.
6. Comme dans le cas précédent (méthode n°1), les sachets sont calés dans la boîte de stockage avec des compresses larges et/ou du coton cardé.

Remarque importante : pour préserver les données (date, lieu, altitude, etc.) de collecte, on aura le choix entre deux possibilités :

- les inscrire sur chaque papillote avant de l’insérer dans la pochette étanche
- ne placer dans ce sachet hermétique que les spécimens d’une seule collecte avec une étiquette portant ces données ou présentant un n° (ou tout autre symbole) renvoyant précisément aux informations spécifiques inscrites sur un carnet.

L’observation de ce protocole évite le ramollissement avant l’étalage. L’efficacité du procédé au chlorocrésol nous a été confirmée par nos amis spécialistes des lycènes néotropicaux qui en usent régulièrement.

Les cristaux de chlorocrésol ayant été au contact des pochettes, il faut manipuler celles-ci avec des gants lors de l’étalage. Le chlorocrésol résiduel (non sublimé) est récupéré pour usage ultérieur.

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(Lepidoptera : Danaidae)

Jean-Marc GAYMAN, Athanasios KOUTROUMPAS & Jacques OUVAROFF

Idea blanchardii togiana ssp. nova à Pulau Taupan (août 2008). Photo : J.-M. Gayman

Remerciements :

Marc METZGER qui nous a ouvert sa collection de Danaidae, Jean-François CHARMEUX pour ses conseils avisés et sa patiente collaboration.

Résumé

Idea blanchardii togiana ssp. nova est décrite des Îles Togian dans le Golfe de Tomini (Togian Kepulauan, Sulawesi Tengah, Indonésie). Ses caractères constants et distinctifs sont présentés et comparés à ceux des sous-espèces géographiquement et morphologiquement les plus proches.

Abstract

Idea blanchardii togiana ssp. nova is described from the Togian Archipelago in the Tomini Bay (Togian Kepulauan, Sulawesi Tengah, Indonesia). Her peculiar and regular characters are presented below and compared to other subspecies close geographically and morphologically.

Mots-clés – Key words

Idea, Banggai, Bantimurung, Danaidae, Euploeina, nova subspecies, Palu, Peleng, Sulawesi, Togian, Oriental, Indonésie.

Glossaire

Kepulauan = archipel ; Pegunungan = chaîne de montagnes ; Pulau = île ; Sulawesi Selatan = Sulawesi Sud ; Sulawesi Tengah = Sulawesi Centre ; Sulawesi Tenggara = Sulawesi Sud-est ; Sulawesi Utara = Sulawesi Nord. En bahasa indonesia.

Idea blanchardii togiana ssp. nova, de Bomba, Pulau Batudaka (août 2008).
Photo : J.-M. Gayman

Introduction

La littérature récente (DE JONG & VANE-WRIGHT, 2003, 228) décrit neuf sous-espèces d’Idea blanchardii MARCHAL, 1845, Danaïde endémique de Sulawesi :

• Sur Sulawesi et îles proches : blanchardii MARCHAL, 1845, (LT : « nord Sulawesi »), marosiana FRUHSTORFER, 1903 (LT : « Maros, sud Sulawesi), garunda FRUHSTORFER, 1910 (LT : ? ; Kepulauan Sangihe, selon DE JONG & VANE-WRIGHT), kuehni RÖBER, 1887, (LT : « Kep. Banggai ») et paluana MARTIN, 1914 (LT : « Palu », selon la fiche Idea blanchardii paluana du Museum of Natural History (Lepindex), Centre Sulawesi, selon DE JONG & VANE-WRIGHT).

• Les autres ssp. : djampeana FRUHSTORFER, 1899 (LT : « Pulau Tanahjampea »), phlegeton FRUHSTORFER, 1904 (LT : « Kep. Tugangbesi »), munaensis FRUHSTORFER, 1899, (LT : « Pulau Muna » et Pulau Kabaena) et silayara MARTIN, 1914 (LT : « Pulau Salayar ») proviennent d’îles ou d’archipels de l’extrême Sud de Sulawesi et sont très distantes de Togian Kepulauan.

Selon nous, la population bien caractérisée des Îles Togian dans le Golfe de Tomini mérite description comme sous-espèce nommée togiana en référence au nom de l’archipel où elle abonde.

Description d’Idea blanchardii togiana ssp. nova

Nous n’avons pu considérer d’exemplaire considéré comme tel de la ssp. I. b. paluana MARTIN, 1914, de Sulawesi Centre. Les ssp. I. b. munaensis, I. b. phlegeton, I. b. silayara, I. b. djampeana, etc., relevant d’îles et d’archipels éloignés de Togian Kepulauan, on analysera surtout les différences séparant togiana ssp. nova de kuehni, de blanchardii blanchardii et de marosiana.

• L’holotype mâle provient de Pulau Taupan comme l’holotype femelle. Les paratypes sont constitués des exemplaires suivants : 2 de la côte entre Poso et Ampana, 21 de Pulau Batudaka, 26 de Pulau Taupan (49 au total).

• Les mâles de togiana ssp. nova ont en moyenne une envergure de 122,83 mm et une longueur d’aile antérieure (AA) supérieure de 70,5 mm. Le bord externe de l’aile antérieure est rectiligne. Sur un fond blanc, togiana spp. nova ? présente des motifs très noirs : nervures, stries intranervurales, macules de la zone discoïdale, apex et zones marginales. Aux AA, une large tache discale située aux deux tiers de la cellule, très noire, atteint les bords de la cellule pour rejoindre d’un côté la tache costale, de l’autre la tache de la zone comprise entre N2 et N3. Toujours aux AA, outre deux grosses taches noires arrondies (l’une entre N1 et N2, la seconde entre N2 et N3), la tache costale, très allongée, épaisse et très noire, caractérise I. b. togiana ssp. nova : seule sous-espèce (avec I. b. phlegeton) d’Idea blanchardii à présenter ce caractère très constant dans notre échantillon. L’aile postérieure se présente comme l’AA : blanche avec des nervures noires entre lesquelles se situent des traits noirs plus épais partant du bord de l’aile (stries intranervurales). Le plus souvent, la zone marginale présente une bande noire discontinue au-dessus de l’apex et autour de l’angle anal. Le dimorphisme sexuel est faible. La femelle se distingue du mâle par une envergure un peu plus petite (2 mm de moins), et par un obscurcissement moins marqué de l’apex et de la suffusion noire de la zone marginale de l’AA, parfois interrompue au niveau de N4 et N5.

Diagnose comparative

Le tableau ci-dessous compare Idea blanchardii togiana ssp. nova et les autres sous-espèces (pour les ??).

Sur treize caractères morphologiques, togiana spp. nova en partage neuf avec kuehni et six avec paluana. Pour quatre autres, la ssp. nova s’individualise face à toutes les autres ssp. y compris kuehni.

Discussion

La validité et la distribution des sous-espèces d’Idea blanchardii à Sulawesi Nord et Centre présentent dans la littérature spécialisée une relative confusion. Qu’on en juge :

• Le nombre des sous-espèces : FRUHSTORFER (entre 1899 et 1910) mentionne six sous-espèces (+ tondana), D’ABRERA (1982) en reconnaît six, YATA & MORISHITA (1985) en retiennent huit ssp., DE JONG & VANE-WRIGHT (2003) montent jusqu’à onze ssp. et, enfin, MARKKU SAVELA (Funet) revient à six ssp.

• FRUHSTORFER (1910) donne le taxon garunda pour Sulawesi Est. Kazuhiko MORISHITA (YATA & MORISHITA, 1985, 521) en élargit considérablement la localisation : Centre Célèbes, Est Célèbes, Palopo, Patu (localité introuvable dans le « Directory of Cities, Towns, and Regions in Indonesia »). De leur côté, DE JONG ET VANE-WRIGHT (2003) indiquent le seul archipel de Sangihe, entre Sulawesi Nord et les Philippines.

• Dans ses premières descriptions FRUHSTORFER (SEITZ, 1908, 223) associait garunda de l’Est des Célèbes avec Hestia (Idea) blanchardii kuehni, avant de les distinguer comme ssp. différentes. Le taxon tondana VOLLENHOVEN, 1860 n’est pas décrit par FRUHSTORFER, bien que signalé dans le paragraphe faisant la séparation entre H. b. garunda et H. b. kuehni. Nous n’en trouvons aucune autre description et, comme nous le verrons, le NHM ne valide pas cette sous-espèce).

• Kazuhiko MORISHITA (1985, 521) représente garunda (mâle et femelle). Au regard de la planche 118 où figurent garunda et marosiana, les différences entre les deux ssp. paraissent bien ténues, sinon inexistantes. On remarquera que la carte de répartition des ssp. (p. 520) réduit la zone de marosiana à la moitié Sud de la péninsule SO et accorde une aire considérable à garunda (les trois quarts de Sulawesi). Ne trouvant aucune autre nouvelle description de garunda FRUHSTORFER, 1910, nous confirmons la synonymie (Idea blanchardii kuehni RÖBER, 1887 = Idea blanchardii garunda FRUHSTORFER, 1910, syn. nov.) établie par les curateurs du Museum of Natural History de Londres qui ont assimilé garunda avec kuehni.

• B. D’ABRERA (1982, 197) considère que la ssp. garunda décrite par FRUHSTORFER est synonyme d’I. b. marosiana (pour le Sud, l’Est et le Centre de Sulawesi). Markku SAVELA adopte la même assimilation et doute de la validité de la ssp. Nous en trouvons une confirmation avec l’exemplaire photographié sur la page internet « Insect collector » consacrée au genre Idea, et légendé : « Idea blanchardii garunda, male, Bungadidi, near Palopo, sea-level, South to Central Sulawesi », qui nous paraît tout à fait être I. b. marosiana.

• Nous pensons que a) les garunda décrits par FRUHSTORFER en 1910 sont, comme indiqué ci-dessus, des kuehni RÖBER, 1887; b) que les garunda présentés par MORISHITA (et d’autres) sont, comme le pensent D’ABRERA et SAVELA, des marosiana FRUHSTORFER, 1903. Ces confusions résultent, pour une large part, de l’imprécision géographique des localisations. Ce que MORISHITA reconnaît volontiers : « The separation of the subspecies is rather intricate in Celebes, for their localities mentionned in literature overlapped with each other … » (1985, 521).

• Pour garunda, de même que pour tondana, le MHN ne donne aucune localisation et semble réfuter la validité de ces dénominations données comme « junior subjective synonyme » (fiches Idea blanchardii garunda et I. b. tondana ; site internet Lepindex). Que l’on décide, comme les spécialistes du MNH, d’assimiler garunda à kuehni ou qu’on le confonde, comme B. D’ABRERA, avec marosiana, il n’en demeure pas moins que togiana ssp. nova ne ressemble ni à kuehni ni à marosiana et ne peut donc être garunda.

• La sous-espèce paluana est présentée par DE JONG ET VANE-WRIGHT (2003) comme endémique de Sulawesi Centre, sans autre précision de localisation (ni illustration). Lepindex propose comme LT, en citant MARTIN (1914) : « Palu » (Sulawesi Centre, côte occidentale). Le compartimentage orographique favorise la présence pour Sulawesi Centre de deux sous-espèces : paluana à l’Ouest du Tineba Pegunungan et de la région du Lore Lindu, togiana ssp. nova vers le Nord-Est. Palu, se situant à la base de l’immense arc montagneux qui mène jusqu’à Manado où vole blanchardii blanchardii et constituant – dans le sens nord-sud – un corridor plutôt qu’une barrière, on supposait, sans l’avoir vu, que paluana était aussi de couleur bistre (comme blanchardii blanchardii). Nous trouvons dans la collection de Marc Metzger un individu présenté comme I. b. garunda. Ce papillon ne ressemble en rien aux garunda figurant dans MORISHITA (voir le tableau ci-dessus). Sa couleur, d’un bistre plus clair (crème) que celui de marosiana (ou garunda), n’est pas blanche. Autre différence d’avec togiana : la tache infracellulaire de l’AA est isolée de la cellule. Localisé de Palu, nous en concluons qu’il s’agit bien d’I. b. paluana et que ce taxon se distingue nettement d’I. b. togiana ssp. nova.
  

  

  Idea blanchardii paluana, environs de Palu (Sulawesi). Photo : Jean-Marc Gayman

  Spécimen de la coll. Metzger présenté comme Idea blanchardii garunda : en fait Idea blanchardii paluana (Palu).
  Photo : J.-M. Gayman

• Par rapport aux autres ssp. Idea blanchardii togiana ssp. nova semble plus proche, malgré les différences constantes exposées plus haut, d’I. b. kuehni : ces deux ssp. constituent un « complexe » que caractérisent trois traits communs : la blancheur du fond, la finesse des nervures et l’importance des taches noires. La première se présenterait alors peut-être comme une ssp. intermédiaire entre les ssp. occidentales (le long du grand arc allant de Manado à Makassar), de couleur bistre ou crème et ornées de taches plus petites (sauf paluana), et kuehni (la plus orientale).

Nous proposons la distribution suivante des sous-espèces d’Idea blanchardii pour Sulawesi et ses archipels satellites (sans tenir compte des plus méridionaux en Mer de Florès et en Mer de Banda) :

• Au Nord (Sulawesi Nord, Kepulauan Sangihe ; Pulau Lembeh et encore Doluduo, localité citée par MORISHITA) : Idea blanchardii blanchardii MARCHAL, 1845. Au Centre (partie occidentale, région de Palu) : Idea blanchardii paluana MARTIN, 1914. Au Centre (partie orientale, région d’Ampana et Kepulauan Togian) : Idea blanchardii togiana ssp. nova. Kepulauan Banggai : Idea blanchardii kuehni RÖBER, 1887 (= garunda FRUHSTORFER,1910, syn. nova). Au Sud (depuis la région du Gunung Balease jusqu’à Bantimurung et Makassar) : Idea blanchardii marosiana FRUHSTORFER, 1903. À Sulawesi Tenggara (Sud-Est), existerait une ssp. non nommée I. b. ssp ROOS, 1993 (VANE-WRIGHT & DE JONG, 228).

• 
  Carte de la répartition des ssp. d’Idea blanchardii à Sulawesi et dans les archipels proches. La localisation de la (problématique) ssp. I. b. garunda à Kep. Sangihe est donnée d’après DE JONG & VANE-WRIGHT.

Plante nourricière, habitat et répartition géographique connue

Selon DE JONG ET VANE-WRIGHT (2003, 228), la PHL demeure inconnue. Ces auteurs citent IGARASHI & FUKUDA (2000) qui décrivent tous les stades de l’espèce, élevée avec Parsonsia (non indigène) (Apocynaceae).

Idea blanchardii togiana nova ssp. n’a été rencontrée qu’à de basses altitudes et, le plus souvent, de manière localisée :

• côte Nord de Sulawesi Centre (Sulawesi Tengah) : exemplaires collectés à Malei (30 Km. est de Poso) alt. : 16 m, 1°24′43.91 »S/120°51′26.92 »E. D’autres vus entre cette localité et Ampana (Marowo).

• Togian Kepulauan : Pulau Batudaka :

- Island Retreat : 0°32′22.17S/121°39′44.42 »E, niveau de la mer.
- Village de Bomba : 0°31′00.54 »S/121°40′00.78 »E ; alt. : 0 à 100 m.

La topographie de Sulawesi facilite le compartimentage et, partant, le processus de développement de sous-espèces. Cette zone, comprenant la côte Nord de Sulawesi Centre Est et l’archipel des Togian, s’individualise bien. Elle est isolée de Sulawesi Nord par l’étendue du Golfe de Tomini, de Sulawesi Sud et Ouest par la chaîne des Monts Tineba (sommets à plus de 2000 m), du reste de Sulawesi Centre et de la partie Sud de la péninsule orientale par les chaînes des Monts Pompangeo (2500 m), du Gunung Katoposo ((2835 m) et des Monts Balinggara (sommets à plus de 2000 m).

Idea blanchardii togiana ssp. nova est rare, semble-t-il, dans les parties accessibles de forêt primaire. Le taxon est commun mais localisé dans des biotopes variés : forêt secondaire et zones cultivées (plantations de cocotiers avec sous-bois buissonnant), souvent à proximité des villages. Il se pose facilement sur les fleurs pour butiner (lantana, par exemple).

Les autres Danaidae rencontrés sur les mêmes biotopes sont : Ideopsis vitrea arachosia FRUHSTORFER 1910, Ideopsis juventa tontoliensis FRUHSTORFER 1897, Danaus genutia leucoglene FELDER & FELDER 1865, Anosia (Danaus) ismare fulva RIBBE 1890, Euploea redtenbacheri redtenbacheri C. & R. FELDER 1865.

Quelques autres taxa fréquentant les mêmes biotopes : Papilio polytes alcindor OBERTHÜR 1879, Papilio ascalaphus ascalaphus BOISDUVAL 1836, Papilio gigon gigon FELDER & FELDER 1864, Graphium codrus celebensis WALLACE 1865, Graphium agamemnon comodus FRUHSTORFER1903 ; Catopsilia pyranthe pyranthe LINNAEUS 1758, Catopsilia pomona flava f. pomona BUTLER 1869, Eurema hecabe latimargo HOPFFER 1874, Eurema celebensis celebensis WALLACE 1867, Eurema tominia tominia VOLLENHOVEN 1865 ; Jamides celeno kalawarus RIBBE 1926, Nacaduba kurava menyangka TAKANAMI 1990 ; Ypthima kalelonda celebensis ROTHSCHILD 1892 ; Cupha arias celebensis FRUHSTORFER 1899, Phalanta alcippe celebensis WALLACE 1869, Hypolimnas bolina bolina LINNAEUS 1758, Hypolimnas anomala stellata FRUHSTORFER 1912, Junonia hedonia intermedia FELDER & FELDER 1867.

Comparaison entre plusieurs ssp. d’Idea blanchardii :
- en haut à gauche : Idea b. kuehni
- en haut au milieu : Idea b. munaensis
- en haut à droite : Idea b. phlegeton
- au milieu : Idea b. togiana ssp. nova
- en bas à gauche : Idea b. marosiana
- en bas au milieu : Idea b. paluana
- en bas à droite : Idea b. blanchardii
Photo : J.-M. Gayman

Conclusion

De nombreuses questions demeurent quant à l’étendue de la zone couverte par Idea blanchardii ssp. nova.

• Couvre-t-elle l’ensemble des Îles Togian (notamment les plus orientales) ?
• Quelle est son extension occidentale le long du Golfe de Tomini vers Poso et au-delà ?
• S’agit-il seulement de la côte Nord de la péninsule orientale de Sulawesi Centre ?
• Quelle est la sous-espèce présente sur le versant méridional (région, à notre connaissance, peu explorée par les lépidoptéristes) dans la région de Luwuk, face à Pulau Peleng où vole Idea blanchardii kuehni ?

Références

• D’ABRERA, Bernard, Butterflies of the Oriental Region. Part I Papilionidae, Pieridae & Danaidae, Hill House, Victoria, 1982, 244 pp.

• IGARASHI, S. & FUKUDA, H., The life histories of Asian butterflies, Vol. 2 : i-xxvii, 1-711, Tokyo, 2000.

• NISHIMURA, Ryoichi, « Butterflies of Peleng Island with description of a new ssp. of Hebomoia leucippe from Peleng », IWASE n°.1?3, 72 pp. (10 color plates), Aug. 31, 1983.

• SEITZ, Macrolépidoptères du globe. Faune indo-australienne, tome 9, mai 1908

• VANE-WRIGHT, R. I. & DE JONG, R., The Butterflies of Sulawesi. Annotated checklist for a critical island fauna, Leiden, Nationaal Natuurhistorisch, Zoologische Verhandelingen, 2003, 268 p.

• YATA, OSAMU & MORISHITA, KAZUHIKO, Butterflies of the South East Asian Islands, Vol.II. Pieridae and Danaidae, 623 pp. (162 color plates), english edition published : May 1985, Plapac Co., Tokyo.

Sites internet :

• Butterflies of Southeastern Sulawesi (Papilionidae, Pieridae, Nymphalidae, Riodinidae, Lycaenidae). An Illustrated Checklist. Southeastern Sulawesi includes mainland, Buton, Kabaena, Muna, Wowoni and Muna islands, and Kep. Tukangbesi.

• Directory of Cities, Towns, and Regions in Indonesia

• Le genre Idea

• MARKKU SAVELA (Funet) : Idea blanchardii :

• Museum of Natural History (Londres) : site Lepindex :

- pour Idea blanchardii garunda
- pour Idea blanchardii paluana

• VANE-WRIGHT, R. I. & DE JONG, R., The Butterflies of Sulawesi. Annotated checklist for a critical island fauna, Leiden, Nationaal Natuurhistorisch, Zoologische Verhandelingen, 2003, 268 p. Version pdf :

www.lepido-france.fr/wp-content/uploads/file/Butterflies of Sulawesi.pdf

Compte-rendu du voyage à Sulawesi en août 2008 (site lepido-france)

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Affiche de l’Exposition C’est la vie ! Vanités de Pompéï à Damien Hirst. Musée Maillol, 2010.

Nous avons visité l’exposition « C’est la vie ! Vanités de Pompéï à Damien Hirst« , au Musée Maillol
(3 février au 28 juin 2010).

61, rue de Grenelle, Paris 7e
Tous les jours de 10 h 30 à 19 heures, vendredi jusqu’à 21 h 30

Catalogue de l’Exposition aux Éditions Skira/Flammarion. Extrait (quatrième page de couverture) :

« La civilisation occidentale, à Pompéï comme dans l’antiquité gréco-romaine, a interrrogé notre fin dernière en multipliant les figurations du corps humain post-mortem. Memento mori : souviens-toi que tu vas mourir, disait-on à Rome. Mais c’est au XVIIe siècle, entre l’austérité de la Réforme protestante aux Pays-Bas et le dramatisme du style baroque naissant en Italie, qu’apparaît la Vanité. Art entièrement dévolu à la tête de mort at au squelette, cette édification morale et personnelle sur le caractère illusoire et vain des biens de ce monde connaît une grande diffusion, dépassant les Hollandais pour s’insinuer dans l’oeuvre de Caravage, de Zurbaran ou de Georges de La Tour. Cézanne marque à nouveau l’irruption d’un macabre délivré de tout pathos dans la peinture moderne, autorisant Picasso et les surréalistes à en tracer les nouveaux contours. À la fin du XXe siècle, des néo-Pop aux Young British Artists, et des néo-fauves allemandds aux graffistes new-yorkais, l’art le plus contemporain s’est attaché à cristalliser la vanité d’une civilisation. De Pompéï à Damien Hirst, « C’est la vie ! » rend compte des métamorphoses d’une mort qui nous va si bien. À l’heure de la disparition de l’espèce programmée. »

Par excellence symbole de « vanité » (éclatant mais fragile, vivace mais éphémère), le papillon, de l’antiquité à la modernité, s’insinue, de manière récurrente, entre Eros et Thanatos. Souvent, opposé à l’absolu du crâne, il incarne l’individualité et la vitalité.

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Atrophaneura (Byasa) adamsoni à Koh Chang

En juillet 2007, je photographie à Koh Chang plusieurs Atrophaneura adamsoni quelque peu différents de ceux figurés (il s’agit de la ssp. nominale adamsoni GROSE-SMITH, 1886) dans le livre de Pisuth Ek-Amnuay, Butterflies of Thailand, Bangkok, 2006. Intrigué par ces dissemblances, j’expédie ces photos à M. Ek-Amnuay (également animateur du site internet Siam Insect-Zoo & Museum). Selon lui, ces clichés constituent la première mention de la présence dans la province de Trat (Sud-Est de la Thaïlande, non loin de la frontière cambodgienne), d’une nouvelle sous-espèce décrite récemment du Sud de la Thaïlande (région de Surat Thani) : A. adamsoni takakoae UEHARA, 2006. Sous le titre A new butterfly subsp. from Trat, M. Ek-Amnuay publie ces photos en écrivant :

« Mr. Jean-Marc Gayman who visited Klong Phrao, Koh Chang (Trat Province) recently sent me some nice photos from that place including some butterflies, one of which a new subspecies for Thailand. In my present book, Butterflies of Thailand-2006, the butterfly namely Atrophaneura adamsoni, did not be classified down to subspecific level. However, Mr. Uehara from Japan reported a new subspecies of this butterfly as Atrophaneura adamsoni takakoae by the specimens from Surat Thani in 2006. » (malaeng.com)

Atrophaneura adamsoni takakoae UEHARA, 2006

La ssp. takakoae (Uehara, J., 2006 : A new subspecies of Byasa adamsoni (Grose-Smith) (Lepidoptera: Papilionidae) from South Thailand. Butterflies 43:4-5, 4 figs.) n’était connue que par de rares spécimens (le premier provenant, en 1972, de Nakhon Si Thammarat). Sur son site consacré aux lépidoptères d’Asie du Sud-Est (A Check List of Butterflies in Indo-China, Chiefly from Thailand, Laos & Vietnam), I. Yutaka reconnait n’avoir pu étudié qu’un seul exemplaire (Surat Thani, Koh Samui, Ramai River. 2007.03.20) de takakoae (pour une vingtaine d’A. adamsoni adamsoni, principalement du Nord de la Thaïlande : région de Chiang Mai). En 2008, Leslie Day observe 7 à 8 exemplaires, mâles et femelles, près de la cascade d’Hin Lad à Koh Samui (voir le forum ButterflyCircle et le site de Leslie Day : Butterflies of Koh Samui). En voici les photos :

En comparaison,  les adamsoni de Koh Chang présentent des taches triangulaires aux ailes postérieures bien plus développées que chez takakoae :

Les spécimens de Koh Chang se distinguent aussi assez nettement des A. adamsoni adamsoni du Nord de la Thaïlande : leurs taches marginales et postdiscales (ailes postérieures) sont plus grandes ; ils se rapprochent  cependant des adamsoni de la région de Phetchaburi (à l’Ouest de Bangkok) :

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